مقایسه باکتری شناسی و ویژگی‌های ماکروسکوپی (کش آمدن و شفاف بودن) و میکروسکوپی (سرخسی شدن و نظم کریستال‌ها) ترشحات فحلی در گاوهای سالم و واکل

نوع مقاله: مقاله پژوهشی (اصیل)

نویسنده

گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار

چکیده

 دراین پژوهش 42رأس گاو واکل (گروه آزمایشی) و18رأس گاوسالم (گروه شاهد) آماده تلقیح هلشتاین فحل ازیکی ازدام‌پروری‌های خراسان رضوی فراهم شد. خون از ورید زیردمی اخذ وسرم آن‌ها پس ازجداسازی منجمد وهمراه با لیزابه فحلی به آزمایشگاه ارسال شد. در آزمایشگاه، غلظت استرادیول سرم به کمک روش RIA و دیگر مشخصات لیزابه با مشاهده مستقیم (کش‌آمدن و شفاف بودن) ویا به کمک میکروسکوپ (سرخسی‌شدن و نظم کریستال‌ها) و همچنین نتیجه کشت باکتری شناسی تعیین شد. نتایج نشان داد که میانگین کش‌آمدن (cm) (9/0=P ,3/0±3/3 ,4/0±1/3 ,3/0± 25/3 ,2/0± 15/3)، میانه سرخس‌ شدن ساده (3/0=P ,3 ,2 ,3 ,5/2)، میانه سرخسی شدن بررسی شده بافتوشاپ(1/0=P ,4 ,4 ,3 ,3)، میانه منظم بودن کریستال‌ها (85/0=P ,2 ,2 ,2 ,2)، میانه شفاف بودن لیزابه (06/0=P ,2 ,2 ,5/1 ,2) و میانگین غلظت استرادیول(pg/ml) (7/0=P، 3 ± 3/5، 5/1 ± 4، 7/1 ± 7/4، 4/2 ± 8 ) به‌ترتیب ازچپ به راست درگروه واکل‌غیرآبستن(34راس)، واکل‌آبستن(8 راس)، سالم غیرآبستن (10 راس) وسالم آبستن (8 راس) بود. توزیع دام‌ها دردرجات مختلف شاخص‌های بررسی شده در لیزابه فحلی معنی‌دار نبود(05/0<P). آزمون اسپرمن تنها میان میزان سرخسی‌شدن بررسی شده با فتوشاپ و گروه‌های آزمایشی و شاهد ارتباط معنی‌داریافت (017/0=P , 3/0-=r) به‌گونه‌ای‌که درجه 3 سرخسی شدن (معادل سرخسی‌‌شدن40 تا60% لیزابه) برای باروری به‌ترین و درجات کم‌تر یا بیش‌تر از آن نامناسب تلقی شد. نتایج باکتری شناسی نشان داد که میان باکتری‌های جدا شده و درجات سرخصی شدن، کش آمدن، شفاف بودن و منظم بودن کریستال‌ها ارتباطی وجود نداشت (P>0.05) درحالیکه اشرشیا کلی، کلبسیلا، تروپرلا پیوژنز، استافیلوکوک ‌های بتا همولتیک به طور معنی داری از گروه واکل‌ها بیشتر جدا شد (P=0.00) .از این مطالعه نتیجه‌گیری شد که از میان شاخص‌های بررسی شده تنها درجه متوسط سرخسی‌شدن بررسی شده با فتوشاپ با میزان آبستن شدن و واکل نبودن دام‌ها ارتباط داشت.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


                                                                                                                                                           

1- Arije, G.R., Wiltbank, J.N., Hopwood, M.L. (1974). Hormone levels in pre and post parturient beef cows. Journal of Animal Sciences 39: 38-47.

2- Barlund, C.S., Carruthers, T.D., Waldner, C.L., Palmer, C.W. (2008). A comparison of diagnostic techniques for postpartum endometritis in dairy cattle. Theriogenology 69: 714-23.

3- Barrett, D.C., Boyd, I.I., Mihm, M. (2004). Failure to conceive and embryonic loss. In: Andrews, A.H., Blowey, R.W., Boyd, H., Eddy, R.G. Bovine Medicine Diseases and Husbandry of Cattle. 2nd Edition, Blackwell Sciences Ltd, London: 552 - 77.

4- Bernardi, S., Rinaudo, A., Marini, P. (2016). Cervical mucus characteristics and hormonal status at insemination of Holstein cows. Iranian Journal of Veterinary Researches 17: 45-49.

5- Cheong, S. H., Nydam, D. V., Galvao, K. N., Crosier, B. M., Ricci, A., Caixeta, L. S., Sper, R.B., Fraga, M.,Gilbert, R.O. (2013). Use of reagent test strips for diagnosis of endometritis in dairy cows. Theriogenology 77: 858-64.

6- Coffey, M. P., Simm, G., Brotherstone, S. (2002). Energy balance profiles for the first three lactations of dairy cows estimated using random regression. Journal of Dairy Sciences 85: 2669- 78.

7- Gwazdauskas, F.C., Thatcher, W. W., Wilcox, C. J. (1973). Physiological, environmental, and hormonal factors at insemination, which may affect conception. Journal of Dairy Sciences 56: 873-77.

8 Gwazdauskas, F.C., Wilcox, C. J., Thatcher, W. W. (1975). Environmental and management factors affecting conception rate in a subtropical climate; Journal of Dairy Sciences 58: 88-92.

9 Hansen, P.J. (2007). Effects of environment on bovine reproduction. In:Youngquist, R.S., Threlfall, W.R. (Eds.) Current Therapy in Large Animal Theriogenology. 2nd Edition, Saunders-Elsevier, Saint Louis, Missoury: 431-41.

10- Harrison, R.O., Ford, S. P., Young, J.W., Conley, A.J. (1990). Increased milk production versus reproductive and energy status of high producing dairy cows. Journal of Dairy Sciences 73: 2749-58.

11- LeBlanc, S.J., Duffield, T.F., Leslie, K.E., Bateman, K.G., Keefe, G.P., Walton, J.S., Johnson, W.H. (2002). The effect of treatment of clinical endometritis on reproductive performance in dairy cows. Journal of Dairy Sciences 85: 2237-49.

12- Lyimo, Z.C., Nielen, M., Ouweltjes, W., Kruip, T.A. Van Eerdenburg, F.C.J.M. (2000). Relationship among estradiol, cortisol and intensity of estrous behavior in dairy cattle. Theriogenology 53: 1783-95.

13- Loffler, S.H., De Vries, M.J., Schukken, Y.H., De Zeeuw, A.C., Dijkuizen, A. A., De Graaf, F.M., Brand, A. (1999). Use of AI technician scores for body condition, uterine tone and uterine discharge in a model with disease and milk production parameters to predict pregnancy risk at first AI in Holstein dairy cows. Theriogenology 51: 1267-84.

14- Lopez, H., Caraviello, D.Z., Satter, L.D., Frickie, P.M., Wiltbank, M.C. (2005). Relation between level of milk production and multiple ovulations in lactating dairy cow. Journal of Dairy Sciences 88: 2783- 93.

15- Machado, V.S., Knauer, W. A., Bicalho, M.L.S., Oikonomou, G., Gilbert, R.O. and Bicalho, R. C. (2012). A novel diagnostic technique to determine uterine health of Holstein cows at 35 days postpartum. Journal of Dairy Sciences 95: 1349-57.

16- Mahesh S.D., Khaja Mohteshamuddin, A., Awati, S.D., Tandle, M.K., Honnappagol, S.S. (2010). Evaluation of pre and post artificial insemination effect of GnRH hormone on conception of  repeat breeder Deoni cows. Veterinar World 3: 209- 11.

17 -Mahmoud, G. B. (2013). Physical and chemical properties of ewes' cervical mucus during normal estrus and estrus induced by intravaginal sponges. Egypt. Journal of Animal Production 50: 7-12.

18 -Marion, G.B., Gier, H.T. (1968). Factors affecting bovine ovarian activity after parturition. Journal of Animal Sciences 27: 1621-23.

19- Modi, L.C., Sathar, B.N., Nakhashi, H.C., KSharma, V., Panchasara, H.H. (2011). Physical characteristics of estrual cervical mucus and conception rate in repeat breeder kankrej cattle. Int. Journal of Agro Veterinary Medical. Sciences l5: 416-23.

20- Mondal, M., Rajkhowa, C., Prakash, B.S. (2006). Relatioship of plasma estradiol-17 β, total estrogen and progesterone to estrus behavior in Methuen (Bos frontalis) cows. Hormonal Behaviors 49: 626-33.

21- Morrow, D. A. (1969). Post-partum ovarian activity and involution of the uterus and cervix of cattle. Veterinary Scope 14: 2-13.

22- Noakes, D., Parkinson, T.J., England, G.C.W. (2009). Veterinary Reproduction and Obstetrics. 9th Edition, Saunders and Elsevier, London: 463-75.

23- Noonan, J. J., Schultz, A. B., Ellington, E. F. (1975). Changes in bovine cervical and vaginal mucus during the estrous cycle and early pregnancy. Journal of Animal Sciences 41: 1084-89.

24- Pascottini, O.B., Hostens, M., Sys, P., Vercauteren, P., Opsomer, G. (2017). Risk factors associated with cytological endometritis diagnosed at artificial insemination in dairy cow. Theriogenology 92: 1-5.

25- Prasdini, W.A., Rahayu, S., Sasmito Djati, M. (2015). Level of estrogen and cervical mucus pH as an indicator of estrus after calving towards the provision of selenium-vitamin E on dairy cow Frisian Holstein (FH). International Journal of ChemTechnics Researche 7: 190-95.

26- Predojevic, R.M., Petrujkic, T., Petrujkic, T.B., Predojevic, M.N. (2007). Influence of the ovarian hormones on the cervical mucus (biophysical properties) and sperm transport in relation to cow’s conception rates. Lucrări Stiinłifice Medicină Veterinară 11: 91-4.

27- Pryce, J. E., Coffey, M. P., Brotherstone, S. (2000). The genetic relationship between calving interval, body condition score and linear type and management traits in registered Holsteins. Journal of Dairy Sciences 83: 2664–71.

28- Pryce, J.E., Coffey, M.P., Simm, G. (2001). The relationship between body condition score and reproductive performance. Journal of Dairy Sciences 84: 1508–15.

29- Sheldon, I.M., Cronin, J., Goetze, L., Donofrio, G., Schuberth, H.J. (2009). Defining postpartum uterine disease and the mechanisms of infection and immunity in the female reproductive tract in cattle. Biology of Reproduction 81: 1025-32.

30- Sheldon, I.M., Noakes, D.E., Rycroft, A.N., Dobson, H. (2002). Effect of postpartum manual examination of the vagina on uterine bacterial contamination in cows. Veterinary Researches 151: 531–34.

31- Sheldon, I.M., Noakes, D.E., Rycroft, A.N., Pfeiffer, D.U., Dobson, H. (2002). Influence of uterine bacterial contamination after parturition on ovarian dominant follicle selection and follicle growth and function in cattle. Reproduction 23: 837-45.

32- Tabataei, S., Moghadan, M.A., Mamouei, M., Mirzadeh, K., Aghaei, A. (2014). Hormonal profile of ovarian follicular fluid and blood plasma during different stages of estrous cycles in Holstein cattle. Iranian Journal of Applied Animal Sciences 4: 263-68.

33- Tsiligiann, Ti.Th., Amiridis, GS., Dovolou, E., Menegatos, I., Chadio, S., Rizos, R., Gutierrez–Adan, A. (2011). Association between physical properties of cervical mucus and ovulation rate in super ovulated cows. Canadian Journal of Veterinary Researches 75: 248-53.

34- Williams, EJ., Fischer, DP., Pfeiffer, DU.,England, GCW., Noakes, DE., Dobson, H., Sheldon, IM. (2005). Clinical evaluation of postpartum vaginal mucus reflects uterine bacterial infection and the immune response in cattle. Theriogenology 63: 102-17.