خصوصیات پاسخ‌های ایمنی القاء شده ناشی از واکسن زنده تخفیف حدت یافته آبله بزی سویه گرگان بر علیه بیماری لمپی اسکین در گاو

نوع مقاله: مقاله پژوهشی (اصیل)

نویسندگان

1 دانشجوی دکتری تخصصی ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه

2 گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه

3 موسسه تحقیقاتی واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج

4 گروه ایمونولوژی، دانشگاه علوم پزشکی بابل

چکیده

ویروس­های بیماری لمپی اسکین، آبله بزی وآبله گوسفندی از اعضاء جنس کاپری­پاکس ویروس و از خانواده پاکس ویریده هستند. این ویروس­ها قرابت ژنتیکی بسیار زیادی دارند. بنابراین استفاده از واکسن­های حاوی سوش­های کاپری­پاکس ویروس مشتق شده از بز و گوسفند برای کنترل بیماری لمپی اسکین می­تواند مفید باشد. هدف از این مطالعه ارزیابی خصوصیات پاسخ­های ایمنی القاء شده ناشی از واکسن آبله بزی بر علیه بیماری لمپی اسکین در گاو می‌باشد. گوساله‌ها از زمان تزریق واکسن تا 5 هفته بعد از آن از نظر ظهور تب و علایم بالینی بطور روزانه مورد معاینه قرار گرفتند. پاسخ­های ایمنی هومورال توسط تست خنثی‌سازی سرم و پاسخ­های ایمنی سلولی توسط تست‌های MTT Real-time PCR, و ELISA مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که در گوساله­های واکسینه شده، تبو تورم موضعی در محل تزریق در مقایسه با گروه کنترل مشاهده شد. در ارزیابی پاسخ ایمنی هومورال افزایش معنی­داری در میزان تیتر آنتی‌بادی اختصاصی در گروه واکسینه در مقایسه با گروه کنترل مشاهده شد، بطوریکه این میزان در روز 35 بعد از واکسیناسیون دارای اختلاف معنی­داری نسبت به سایر روزها بود (05/0P<). در ارزیابی پاسخ ایمنی سلولی، افزایش معنی­داری در بیان ژن IFN-γ در روز 7 و ژن IL-4 در روز 21 بعد از واکسیناسیون در مقایسه با روز صفر و گروه کنترل مشاهده شد (05/0P<) و این در حالی بودکه بیشترین میزان تولید سایتوکاین در مایع­رویی کشت سلول برای IFN-γ و IL-4 در روز 21 بعد از واکسیناسیون مشاهده شد (05/0P<). همچنین شاخص تکثیر لنفوسیتی درگوساله‌های واکسینه، در روز‌های 7، 21 و 35 در مقایسه با روز صفر و گروه کنترل افزایش معنی­داری را نشان داد (05/0P<). بر اساس نتایج این مطالعه واکسن آبله بزی سوش گرگان با القاء پاسخ­های ایمنی هومورال و سلولی قادر به تولید مقادیر مناسبی از آنتی‌بادی­های خنثی­کننده و همچنین با افزایش قدرت تکثیر لنفوسیتی و بیان و تولید سایتوکاین­­ها از ایمنی­زایی مناسبی جهت استفاده در واکسیناسیون در برابر LSD برخوردار است.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


 

  1. Barman, D., Chatterjee, A., Guha, C., Biswas, U., Sarkar, J., Roy, T. K., Roy, B., Baidya, S. (2010). Estimation of post-vaccination antibody titre against goat pox and determination of protective antibody titre. Small Ruminant Research 93: 76-78.
  2. Blanco, E., McCullough, K., Summerfield, A., Fiorini, J., Andreu, D., Chiva, C., Borras, E., Barnett, P., Sobrino, F. (2000). Interspecies major histocompatibility complex-restricted Th cell epitope on foot-and-mouth disease virus capsid protein VP4. Journal of Virology 74: 4902-07.
  3. Coetzer, J. A. W. (2004). Lumpy skin disease; Infectious Diseases of Livestock. Oxford University Press. pp: 1268-76.
  4. Danilo, B., Sebastian, D. G., Juan, P., Juan, M. S., Nancy C., Alejandra, V. C., Mariano, P. F., (2015). Foot-and-mouth disease vaccination induces cross-reactive IFN-γ responses in cattle that are dependent on the integrity of the 140S particles. Virology476: 11-18.
  5. Dar, P. A., Hajam, I. A., Suryanarayana, V. S., Kishore, S., Kondabattula, G. (2015). Kinetics of cytokine expression in bovine PBMCs and whole blood after in vitro stimulation with foot-and-mouth disease virus (FMDV) antigen. Cytokine72: 58-62.
  6. Delirezh, N., Norian, R., Azadmehr, A. (2016). Changes in some pro-and anti-inflammatory cytokines produced by bovine peripheral blood mononuclear cells following foot and mouth disease vaccination. Archives of Razi Institute71: 199-207.
  7. Diallo, A., and Viljoen, G. J. (2007). Genus capripoxvirus. In Poxviruses, Springer. pp: 167-81.
  8. Eble, P., Bouma, A., Weerdmeester, K., Stegeman, J., and Dekker, A. (2007). Serological and mucosal immune responses after vaccination and infection with FMDV in pigs. Vaccine 25: 1043-54.
  9. Eble, P. L., de Bruin, M. G., Bouma, A., van Hemert-Kluitenberg, F., Dekker, A. (2006). Comparison of immune responses after intra-typic heterologous and homologous vaccination against foot-and-mouth disease virus infection in pigs. Vaccine24: 1274-81.
  10. Esther B., Mercedes G. B., Arantza S. P., Paula G., Eliandre D. O., Mari L. V., David A., Victoria L., Francisco S. (2001). Identification of T-cell epitopes in nonstructural proteins of foot-and-mouth disease virus. Journal of Virology 75: 3164–74.
  11. Gari, G., Abie, G., Gizaw, D., Wubete, A., Kidane, M., Asgedom, H., Bayissa, B., Ayelet, G., Oura, C. A., Roger, F., Tuppurainen, E. S. (2015). Evaluation of the safety, immunogenicity and efficacy of three capripoxvirus vaccine strains against lumpy skin disease virus. Vaccine33: 3256-61.
  12. Heba, A. Khafagy, M. G. A., Abdelmoneim M. M., Mohamed A., Saad, A. A. (2016). Preparation and field evaluationof live attenuated sheep pox vaccine for protection of calves against lumpy skin disease. Benha Veterinary Medical Journal31: 1-7.
  13. Mohamed, G., Abdelwahab, H. A. K., Abdelmoneim, M. M., Moustafa, Mohamed A., Saad, A. A. (2016). Evaluation of Humoral and Cell-mediated Immunity of Lumpy Skin Disease Vaccine Prepared from Local strainin calves and Its Related to Maternal Immunity. Journal of American Science21:1-5.
  14. Norian, R., Delirezh, N., and Azadmehr, A. (2015). Evaluation of proliferation and cytokines production by mitogen-stimulated bovine peripheral blood mononuclear cells. Veterinary Research Forum6: 265-71.
  15. OIE (1992). Manual of recommended diagnostic techniques and requirements for biological products. World Organization for Animal Health, Rue de Prony. pp: 1-5.
  16. OIE (2010). Lumpy skin diseas; Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. World Organization for Animal Health, Paris. pp: 1-13.
  17. Reed, L. J., and Muench, H. (1938). A simple method of estimating fifty per cent endpoints. American Journal of Epidemiology27: 493-97.
  18. Ryan, J. E., Dhiman, N., Ovsyannikova, I. G., Vierkant, R. A., Pankratz, V. S., Poland, G. A. (2009). Response surface methodology to determine optimal cytokine responses in human peripheral blood mononuclear cells after smallpox vaccination. Journal of Immunological Methods341: 97-105.
  19. Tilahun, Z., Berecha, B., Simenew, K., Reta, D. (2014). Towards Effective Vaccine Production: A Controlled Field Trial on the Immunological Response of Three Lumpy Skin Disease Vaccine Strains in Dairy Farms. Academic Journal of Animal Diseases 3: 17-26.
  20. Tuppurainen, E. S., Pearson, C. R., Bachanek-Bankowska, K., Knowles, N. J., Amareen, S., Frost, L., Henstock, M. R., Lamien, C. E., Diallo, A., Mertens, P. P. (2014). Characterization of sheep pox virus vaccine for cattle against lumpy skin disease virus. Antiviral Research 109: 1-6.
  21. Varshovi, H. R., Keyvanfar, H., Aghaiypour, K., Pourbakhsh, S. A., Shooshtari, A. H., Aghaebrahimian, M. (2009). Capripoxvirus identification by PCR based on P32 gene. Archives of Razi Institute64:19-25.
  22. Zaros, L. G., Bricarello, P. A., Amarante, A. F. T., Coutinho, L. L. (2007). Quantification of bovine cytokine gene expression using real-time RT-PCR methodology. Genetics and Molecular Biology 30: 575-79.
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


دوره 14، شماره 1 - شماره پیاپی 36
بهار و تابستان 1397
صفحه 15-26
  • تاریخ دریافت: 21 تیر 1396
  • تاریخ بازنگری: 20 تیر 1397
  • تاریخ پذیرش: 10 آبان 1396